Propagación in vitro de Caladium bicolor con diferentes dosis de reguladores de crecimiento

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33064/iycuaa2021833749

Palabras clave:

Cultivo de tejidos vegetales, organogénesis, plantas bulbosas, auxinas, citocininas, plantas de ornato

Resumen

El Caladium bicolor es un cultivo ornamental utilizado en el embellecimiento del paisaje urbano, plazas y jardines y es exportado a otros países. El objetivo fue desarrollar un sistema de propagación in vitro de Caladium bicolor por organogénesis. Se agregaron los reguladores de crecimiento 6-bencilaminopurina (BAP) y ácido naftaleneacético (ANA) al medio basal MS con cuatro dosis cada uno: 1.0:0.10, 1.5:0.15, 2.0:0.20 y 2.5:0.25 mg L-1 de BAP:ANA para la etapa de producción de brotes y 0.10:1.0, 0.15:1.5, 0.20:2.0 y 0.25:2.5 mg L-1 de BAP:ANA para la etapa de enraizamiento. La dosis de 1.5:0.15 mg L-1 de BAP:ANA mostró mejor respuesta en la producción de brotes y hojas, y en la etapa de enraizamiento la dosis con 0.15:1.5 mg L-1 de BAP:ANA presentó plantas con mayor número y longitud de raíces. Estas dosis presentaron plantas con componentes vegetativos más balanceados, permitiendo obtener plantas fortalecidas para la etapa de aclimatación.

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Biografía del autor/a

Jorge Armando Chávez-Simental, Universidad Juárez del Estado de Durango

Instituto de Silvicultura e Industria de la Madera

Cecilia Pulido-Díaz, Universidad Juárez del Estado de Durango

Instituto de Silvicultura e Industria de la Madera

Citas

Ahmed, E. U., Hayashi, T., & Yazawa, S. (2004). Auxins increase the occurrence of leaf-colour variants in Caladium regenerated from leaf explants. Scientia Horticulturae 100: 153–9. DOI:10.1016/j.scienta.2003.08.012

Ali, A., Munawar, A. & Naz, S. (2007). An in vitro study on micropropagation of Caladium bicolor. International Journal of Agriculture & Biology. 9 (5): 731-735. DOI:1560–8530/2007.

Bernd, R. B., Trivilin, A. P., Camargo, U. A., & Czermainski, A. B. C. (2007). Micropropagation of hybrids of Vitis labrusca × Vitis rotundifolia rootstocks with resistance to perola-da-terra (Eurhizococcus brasiliensis Hempel, Hemiptera: Margarodidae). Revista Brasileira de Fruticultura 29: 350-354. DOI:10.1590/S0100-29452007000200031

Cai, X., Cao, Z., Xu, S., & Deng Z. (2015). Induction, regeneration and characterization of tetraploids and variants in ‘Tapestry’ Caladium. Plant Cell Tiss Organ Cult 120, 689–700. https://doi.org/10.1007/s11240-014-0636-8

Dello, R., Najamura, K., Moubayidin, L., Perilli, S., Taniguchi, M., Morita, M., Aoyama, T., Constantino, P., & Sabatini, S. (2008). A genetic framework for the control of cell division and differentiation in the root meristem. Science 322, 1380–1384. DOI:10.1126/science.1164147

Dello, R., Scaglia, F., Scacchi, E., Casamitjana, E., Heidstra R., Constantino, P., & Sabatini, S. (2007). Cytokinins determine Arabidopsis root-meristem size by controlling cell differentiation. Current Biology. 17, 678–682. DOI:10.1016/j.cub.2007.02.047

Delgadillo-Díaz de León, J. S., Morales-Domínguez, J. F., Santos-Díaz, M. del S., & Pérez-Molphe-Balch, E. (2013). In vitro propagation of Mexican oaks (Quercus spp.). Polibotánica 35: 85-97. Disponible en: https://www.polibotanica.mx/ojs/index.php/polibotanica/article/view/404/268

Di Rienzo, J. A., Casanoves, F., Balzarini, M. G., González, L., Tablada, M., & Robledo, C. W. (2018). InfoStat version 2018. Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. URL http://www.infostat.com.ar

Francisco-Nava, J. J., Jiménez-Aparicio, A. R., De Jesús-Sánchez, A., Arenas-Ocampo, M. L., Ventura-Zapata, E., & Evangelista-Lozano, S. (2011). Estudio de la morfología y aclimatación de plantas de Laelia eyermaniana Rchb. f. generadas in vitro. Polibotánica, (32), 107-117. Consultado 11 de enero de 2019, http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1405-27682011000200006&lng=es&tlng=es

Goda, H., Sawa, S., Asami, T., Fujioka, S., Shimada, Y., & Yoshida, S. (2004). Comprehensive comparison of auxin-regulated and brassinosteroid-regulated genes in Arabidopsis. Plant Physiology. 134, 1555–1573. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.103.034736

González-Cervantes, G., Valenzuela-Núñez, L. M., Muñoz-Villalobos, J. A., González- Barrios, J. L., & Chávez-Simental, J. A. (2011). Tecnología para cuantificar conductos anatómicos en frutales caducifolios Caso de estudio Nogal Pecanero (Carya illinoensis koch). Revista Chapingo Serie Zonas Áridas, X (2),113-116. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=4555/455545061002

Guerrero, D. R., Mroginski, L. A., Krivenky M. A. & Domínguez, M. C. (2010). Micropropagación de portainjertos de vid de interés para la provincia de Misiones. Revista de la Facultad de Ciencias Agrar¬ias 42: 143-159. ISSN: 0370-4661. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=382837647013

Kyozuka, J. (2007). Control of shoot and root meristem function by cytokinin. Current Opinion in Plant Biology 10(5):442–446 https://doi.org/10.1016/j.pbi.2007.08.010

Mayo, S. J., Bogner, J., & Boyce P. C. (1997). The genera of Araceae. United Kingdom: Royal Botanic Gardens, Kew.

Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15: 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Paponov, I. A., Telae, W. D., Trebar, M., Blilou, I. & Palme, K. (2005). The PIN auxin efflux facilitators: evolutionary and functional perspectives. Trends in Plant Science. 10, 170–177. DOI: 10.1016/j.tplants.2005.02.009

Pierik, R. L. M. (1988). Cultivos in vitro de las plantas superiores, 3rd ed. Ediciones Mundi- Prensa, Madrid, 326 pp.

Rashotte, A. M., Carson, S. D. B., To, J. P., & Kieber, J. J. (2003). Expression profiling of cytokinin action in Arabidopsis. Plant physiology. 132, 1998–2011. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.103.021436

Rees, A. R., & Hanks, G. R. (1979). Potential uses of plant growth regulators in bulb growing and forcing. Acta Horticulturae 91 (16):153–159. DOI:10.17660/ActaHortic.1979.91.16

Seydi, S., Negahdar, N., Taghizadeh, A. R., Ansari, M., & Kaviani, B. (2016). Effect of BAP and NAA on micropropagation of Caladium bicolor (Aiton) Vent., an Ornamental Plant. Journal of Ornamental Plants, 6(1), 59-66.

Shani, E., Yanai, O., & Ori, N. (2006). The role of hormones in shoot apical meristem function. Current Opinion in Plant Biology 9(5):484-489. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2006.07.008

Siddiqui, F. A., Naz, S., & Iqbal, J. (1993). In vitro propagation of Carnation. Advances in plant tissue culture. Proceedings of the 3rd National Meeting of Plant Tissue Culture Pakistan, pp: 43–7.

Thongpukdee, A., Thepsithar, C., & Chiensil, P. (2010). Somaclonal variation of Caladium bicolor (Ait.) Vent. ‘Jao Ying’ after in vitro culture propagation. Acta Hortic 855:281–287. DOI: 10.17660/ActaHortic.2010.855.42

Ying-Hua, S., Yu-Bo, L., & Xian-Sheng, Z. (2011). Auxin–Cytokinin interaction regulates meristem development. Molecular Plant 4:(4) pp. 615-625. DOI: 10.1093/mp/ssr007

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Publicado

2021-08-31

Número

Sección

Artículos de Investigación

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