INTRODUCCIÓN

El fruto de Physalis peruviana L., conocido como goldenberry, uchuva o aguaymanto está tomando gran importancia a nivel global por sus propiedades nutritivas, medicinales, ornamentales y su potencial en la industria alimentaria y cosmética. El fruto es de sabor agridulce, tiene altos contenidos de provitamina A, vitaminas del complejo B, C y minerales como el hierro (Fe) y el fósforo (P) (Fischer, Almanza-Merchán, & Miranda, 2014). La planta es capaz de adaptarse a variadas condiciones climáticas, por lo que es un cultivo potencial, alternativo y viable; especialmente en regiones con suelos poco fértiles (Castañeda-Salinas et al., 2013), con excelente potencial de exportación; ya que el fruto es apreciado en los mercados de Europa, EE. UU. y Canadá (Fischer et al., 2014). Sin embargo, en estos países las normas de comercialización son estrictas y sólo reciben frutos de alta calidad con ausencia de agroquímicos.

El uso ineficiente e indiscriminado de agroquímicos ha ocasionado gran contaminación ambiental, además de la degradación y pérdida de fertilidad en los suelos (Alcarraz-Curi, Heredia-Jiménez, & Julián-Ibarra, 2019). Por ello, el uso de rizobacterias en ambientes protegidos es una alternativa para eficientar el uso de los agroquímicos y lograr una producción agrícola sostenible (FAO, FIDA, OMS, PMA, & UNICEF, 2022). Las bacterias en simbiosis con las plantas actúan como complemento de la raíz en la toma de nutrientes y aumentan su tolerancia a estrés abiótico (Miranda, Ulrichs, & Fischer, 2012); lo que hace que sean llamadas rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal o RPCV, término proveniente del inglés Plant Growth Promoting Rhizobacteria o PGPR (Moreno-Reséndez, García-Mendoza, Reyes-Carrillo, Vásquez-Arroyo, & Cano-Ríos, 2018).

Las bacterias del grupo de RPCV del género Azospirillum fijan el nitrógeno atmosférico (N₂), producen hormonas que promueven el crecimiento y tienen efecto positivo en la translocación de nutrientes desde la raíz hasta la parte aérea de las plantas; también promueven un incremento del contenido de minerales como el calcio (Ca) o potasio (K) y rendimiento de los cultivos, lo que se ha demostrado en varios estudios (Domingues-Duarte, Cecato, Trento-Biserra, Mamedio, & Galbeiro, 2020; Jiménez-Gómez, Celador-Lera, Fradejas-Bayón, & Rivas, 2017; Rueda et al., 2016). Además, las rizobacterias pueden reducir la aplicación de fertilización química hasta 50% (Gómez-Marroquín & Núñez-Zarantes, 2014), por lo que este trabajo tiene como objetivo conocer el efecto de las rizobacterias en la producción y la calidad de goldenberry en invernadero, teniendo como hipótesis que uno de los tratamientos con este tipo de microorganismos aumentará la producción y calidad de fruto de esta especie a la vez que se reduce la fertilización química.

MATERIALES Y MÉTODOS

El estudio se realizó en Saltillo, Coahuila, México, cuya ubicación geográfica es 25° 23' LN y 101º 80' LO, con altitud de 1785 m s. n. m. Se utilizaron plantas de goldenberry (P. peruviana L.) ecotipo Colombia, las cuales se obtuvieron de semilla proveniente de Ecuador por parte de uno de los autores de este trabajo, pues hasta ahora no hay distribuidor en México; se establecieron en un invernadero de mediana tecnología tipo asimétrico con cubierta de polietileno, en suelo acolchado con polietileno negro y riego por goteo.

Se evaluaron 11 tratamientos distribuidos en tres repeticiones, considerando cuatro plantas por tratamiento en cada repetición (tabla 1). Se utilizaron dos cepas de bacterias del género Azospirillum que fueron proporcionadas por la Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro; las cuales eran nativas de un área de matorrales y nopales silvestres en General Cepeda, Coahuila, México, habiendo sido aisladas previamente mediante el método de dilución y siembra en placa con medio libre de nitrógeno NFB (Koul, Tripathi, Adholeya, & Kochar, 2015); para determinar la morfología se realizó la tinción de Gram y se observó al microscopio óptico. La identificación se logró de acuerdo con sus características fenotípicas. Los tratamientos se formaron por estas dos cepas mencionadas (A1 y A2) y una cepa comercial (CC) Azospirillum brasilense llamada Azofer, cada una combinada con tres niveles de fertilización química (FQ), 0, 50 y 100% de la solución Steiner, que se preparó con los siguientes fertilizantes: fosfato monoamónico [(NH₄) H₂ PO₄], nitrato de potasio más azufre [KNO₃ + S], nitrato de calcio [Ca (NO₃)₂], nitrato de magnesio [Mg (NO₃)₂], una mezcla de micronutrientes [Ultrasol micro mix^®], ácido sulfúrico a 90% [H2SO4]; además se contó con un testigo absoluto y otro testigo solo con FQ (100% FQ).

Las semillas de goldenberry se sembraron en febrero de 2019 en charolas de poliestireno de 200 cavidades, usando como sustrato turba (Premier Sphagnum Peat Moss) y perlita mineral (Hortiperl de Termolita) en proporción 60:40. A los 45 días después de la siembra (DDS) se realizó el trasplante en invernadero en un suelo mayormente arcilloso y con pH de 8, en camas con acolchado plástico de color negro y cintilla para riego localizado, con distancia entre surcos de 150 cm y 50 cm entre plantas, a doble hilera con arreglo a tresbolillo, para tener una densidad de 26,666 plantas por hectárea. La planta tuvo un tutorado tipo holandés; se manejó a cuatro tallos, eliminando brotes basales y laterales, además de las hojas de la parte baja en proceso de senescencia y hojas atacadas por plagas.

La solución nutritiva de cada tratamiento se preparó en tanques de 750 l de capacidad protegidos de la luz solar y se aplicó a través del riego cada tercer día, dependiendo de las condiciones climáticas, realizando la aplicación todos los días en días más cálidos. La inoculación de rizobacterias se realizó de acuerdo con lo recomendado en la etiqueta del producto, en la base de cada planta a razón de 20 ml, las cepas nativas a concentración de 1x106 unidades formadoras de colonia (UFC)/ml, y la cepa comercial en dilución de 3.8 g de producto comercial en 1 l de agua, para tener dosis equivalentes, realizando tres aplicaciones cada seis semanas a lo largo del ciclo de cultivo. Se cosechó una vez cada semana, obteniendo 10 cortes del fruto (figura 1).

Componentes de calidad

Se determinó el peso promedio de fruto (PPF) mediante una balanza electrónica de precisión marca Rhino con capacidad máxima de 3 kg y mínima de 0.2 g. Después de ser pesado el fruto se midieron los grados Brix, colocando una gota de jugo de éste en un refractómetro portátil marca Atago con capacidad de hasta 32 grados Brix. La variable vitamina C fue calculada a partir del procedimiento siguiente: se pesaron 20 g de muestra y se trituraron en mortero agregando ácido clorhídrico (HCl) a 2%, a esto se le agregaron 100 ml de agua destilada, después se filtró y se midió el volumen; hecho esto se tomó un alícuota de 10 ml y se tituló con 2,6 dicloroindofenol (reactivo de Thielmann) hasta tornarse a coloración rosácea. Al final se calculó en miligramos por cada 100 gramos (mg·100g^-1) con la fórmula: vitamina C= (VG*VF*0.088*100)/(AV*PM), donde VG: volumen gastado de reactivo de Thielmann en titulación, VF: volumen total filtrado, AV: alícuota valorada, así como PM: peso de la muestra.

Contenido de minerales en fruto

A los frutos se les determinó el contenido de nitrógeno (N), P, K, Ca y magnesio (Mg); para lo cual las muestras de fruto se deshidrataron y enviaron al laboratorio de análisis mineral del Colegio de Postgraduados, Campus Montecillo para su análisis. La determinación de P, K, Ca y Mg se realizó con el extracto resultante de la digestión húmeda del material vegetal (fruto) seco con ácido sulfúrico, ácido perclórico y peróxido de hidrógeno (1.3:0.7:1, v:v:v), según lo descrito por Alcántar y Sandoval (1999). Se tomó lectura de los extractos en un equipo de espectrometría de emisión e inducción por plasma (Agilent 725 Series ICP-OES); en tanto que el contenido de N se determinó en una alícuota de 10 ml del digestado antes expuesto, por medio de destilación de la muestra y valoración por titulación con ácido sulfúrico (Vizcaíno-Ríos, 2021).

Los resultados se analizaron bajo un diseño experimental de bloques completos al azar, realizando el análisis de varianza en cada variable y la comparación de medias se realizó con la prueba de Tukey (p  0.05); además se realizó un análisis de correlación de Pearson, con el programa estadístico Minitab versión 16.

RESULTADOS

Componentes de calidad

Para el PPF se encontró diferencia significativa (p ≤ 0.05) sólo entre dos tratamientos, en donde el tratamiento A2 sin FQ fue el que produjo frutos de mayor peso, 34.7% más que los frutos del tratamiento con 100% de FQ (figura 2).

Con diferencia significativa (p ≤ 0.05) el tratamiento con más contenido de grados Brix fue el de la cepa A1 + 50% FQ, mayor en 13% y 11.5% a las cepas A2 + 100% FQ y CC + 100% FQ, respectivamente; el resto de los tratamientos fueron iguales (figura 3).

En cuanto a contenido de vitamina C, igualmente se encontraron diferencias significativas (P ≤ 0.05) solo entre dos tratamientos; los resultados muestran que el tratamiento con la cepa A2+50% FQ fue la que indujo el mayor contenido de vitamina C, superando en 17.6% al tratamiento A1+100% FQ (figura 4).

Contenido de minerales en fruto

Para el contenido de N y Ca no se encontraron diferencias significativas entre tratamientos, con un contenido alrededor del 1% para N y valores que fluctuaron entre 11 y 12.6 mg 100 g^-1 de fruto para Ca.

Para el contenido de P en los frutos si se tuvo diferencia significativa (p ≤ 0.05), presentando el tratamiento A2 + 50% de FQ el mayor contenido de P, con un valor de 267 mg 100 g-1, el cual fue 17.1% superior que el testigo absoluto; el resto de los tratamientos fueron iguales (figura 5).

Para el contenido de K también se encontraron diferencias significativas (p ≤ 0.05) entre algunos tratamientos, siendo el tratamiento con la cepa nativa A1 sin FQ el que superó a los tratamientos de A2 + 100% de FQ, CC + 100% de FQ y de 100% de FQ, habiendo sido 21.8% mayor comparado con este último (figura 6).

Para el contenido de Mg igualmente se observaron diferencias significativas (p ≤ 0.05), donde la aplicación de la cepa nativa A1 sin FQ tuvo el mayor contenido de este elemento (103 mg 100 g^-1), valor superior en 18.3% al tratamiento que recibió 100% de FQ y en 19.7% al tratamiento con la cepa A2 + 100% de FQ; el resto de los tratamientos fueron iguales (figura 7).

El análisis de correlación indicó solamente una relación positiva entre K y Mg, dando valores significativos de 0.767 para el coeficiente de correlación de Pearson y 0.006 para el valor de p, por lo que después se realizó un análisis de regresión, obteniendo la ecuación de regresión para predecir el contenido de Mg a partir del contenido de K en fruto (figura 8).

DISCUSIÓN

Componentes de calidad

El rango de valores obtenido en el PPF fluctuó entre 2.8 y 3.8 g, lo cual fue similar a lo registrado por Ramírez-Martínez (2022), con frutos de 4.3 g en invernadero con FQ y por Moura, Coutinho, Pio, Bianchini y Curi (2016), quienes mencionan que el peso de frutos varía de 3.4 a 3.7 g. En esta variable la cepa nativa A2 pudo favorecer la solubilización de elementos nutritivos o síntesis de reguladores vegetales y, por ende, se mejoró la absorción de agua y nutrientes; lo que repercute en un mayor peso de frutos, como lo establecen Domingues-Duarte et al. (2020) y Piña-Guillén, García-Meneses, Herrera-López y Flores-Torres (2016). En cuanto al bajo PPF con 100% de FQ, pudo deberse al pH del suelo; ya que en el sitio de muestreo oscila entre 7 y 8.5, valores en los que la absorción de nutrientes puede verse afectada y, como consecuencia, influir en el peso de frutos (Osorio, 2012).

Los valores obtenidos en grados Brix (°Bx) coinciden con los reportados en varios trabajos donde obtuvieron frutos con un rango entre 13 y 15 °Bx (Durán-Ramírez, 2009; Gastelum-Osorio, Sandoval-Villa, Trejo-López y Castro-Brindis (2013). La aplicación de la cepa A1 + 50% FQ indujo mayor absorción de nutrientes por la planta, como el Mg que puede influir en el nivel de azúcares y promover un aumento en los sólidos solubles totales (Martínez, Sarmiento, & Fischer, 2008).

Contenido de minerales en fruto

Para el contenido de N en fruto no hubo diferencias significativas, probablemente porque la planta destinó alguna proporción del N para crecimiento vegetativo y no reproductivo como lo señalan Rodríguez-Mendoza, Miguel Chávez, García-Cué y Benavides-Mendoza (2013). Por otro lado, cabe mencionar que el tamaño de las hojas de este cultivo tuvo un crecimiento aproximadamente 15% mayor a lo que se obtiene en la producción en campo de Colombia (resultados no mostrados), y esto influyó en el contenido de N en fruto, pues Azospirillum se reporta como fijador de N (Santos, Nogueira, & Hungria, 2019). Tampoco para el contenido de Ca se observaron diferencias significativas, posiblemente porque es un elemento poco móvil y por esto tiene dificultad para llegar hasta los frutos (White, 2015). Sin embargo, los resultados están dentro del rango de 8 a 28 mg 100 g^-1 reportado por Puente, Pinto, Castro y Cortés (2011).

Aunque el género Azospirillum no se reporta con capacidad para solubilizar P (Patiño-Torres & Sanclemente, 2014), el tratamiento de la cepa nativa A2 + 50% FQ favoreció la absorción y movilización del mismo al fruto respecto al testigo absoluto; y es un hecho que la respuesta de las plantas es variable en función del microorganismo inoculado (Bonilla-Buitrago et al., 2021), lo que se reflejó en la obtención de valores en el contenido de P que sobrepasan el máximo reportado de 92 mg 100 g^-1 en fruto (Erkaya, Daǧdemir, & Sengül, 2012).

Se obtuvieron altos contenidos de K en el fruto, los cuales son superiores al rango reportado de 210 a 467 mg 100 g^-1 (Puente et al., 2011), destacando el tratamiento con la cepa nativa A1 sin FQ con 825 mg 100 g^-1, el cual es superior a los tratamientos con aporte del 100% de FQ. Lo anterior se pudo deber a que al aplicar FQ disminuye la población y supervivencia de bacterias presentes; contrario a lo que ocurre cuando se utilizan fertilizantes orgánicos, que incrementan la densidad de microorganismos (González-Mancilla et al., 2013).

Igualmente se encontraron cantidades de Mg superiores a las reportadas, pues normalmente su contenido en fruto oscila entre 7 y 19 mg 100 g^-1 (Erkaya et al., 2012; Puente et al., 2011); este hecho se puede atribuir a la actividad de las rizobacterias, que promueven competencia entre cationes en el suelo; sin embargo, en este trabajo para K y Mg en fruto sucedió lo contrario, pues el análisis de correlación indica que al aumentar el contenido de uno también aumenta el contenido del otro, lo que resalta la importancia de ambos en la calidad del fruto (Grzebisz, 2015).

Estos resultados pueden deberse a que las fitohormonas producidas por Azospirillum promovieron un mayor desarrollo radicular, por lo que aumentó la capacidad de absorción de nutrientes, en especial de los tres últimos mencionados anteriormente: P, K y Mg (Fibach-Paldi, Burdman, & Okon, 2012). Por su parte Ipek et al. (2014) y Seymen, Türkmen, Dursun, & Paksoy (2014) obtuvieron resultados similares en hojas de fresa y en frutos de tomate, donde aumentó el contenido de K por actividad de las PGPR. A menudo el uso de microorganismos en la producción agrícola conduce a resultados impredecibles, porque no se conoce con precisión la compleja interacción y modo de acción de todos los factores involucrados (Creus, 2017).

CONCLUSIONES

El uso de rizobacterias es una opción para incrementar la producción y calidad del fruto de goldenberry. La aplicación de la cepa nativa A2 sin FQ aumentó peso del fruto (25.7%), combinada con 50% de FQ aumentó vitamina C (17.6%) y el contenido de P (14.6%) respecto al testigo absoluto, la cepa A1 sin FQ elevó el contenido de K (17.9%) y Mg (15.5%); mientras que combinada con 50% de FQ incrementó grados Brix (11%) respecto al tratamiento con 100% de FQ. Con base en lo anterior se recomienda la aplicación de rizobacterias y la reducción en 50% de la FQ con la finalidad de producir frutos nutritivos de goldenberry (P. peruviana) de forma más sostenible. Futuras investigaciones deberían focalizarse en estudios más detallados sobre esta especie y las PGPR, debido a que esta relación es altamente benéfica desde los puntos de vista productivo y ecológico.

Agradecimientos

El autor principal desea agradecer al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología por el apoyo otorgado a través del Programa de Becas para Estudios de Posgrado.

REFERENCIAS

Alcántar, G. G., & Sandoval, M. V. (1999). Manual de análisis químico de tejido vegetal. Guía de muestreo, preparación, análisis e interpretación. Publicación especial No. 10 (16 pp.). Chapingo, México: Sociedad Mexicana de la Ciencia del Suelo, A. C. Recuperado de https://chapingo.orex.es/cgi-bin/koha/opac-detail.pl?biblionumber=78099&shelfbrowse_itemnumber=151988

Alcarraz-Curi, M., Heredia-Jiménez, V., & Julian-Ibarra, J. P. (2019). Cepas bacterianas nativas con actividades promotoras del crecimiento vegetal aisladas de la rizosfera de Coffea spp. en Pichanaqui, Perú. Biotecnología Vegetal, 19(4), 285–295. Recuperado de http://scielo.sld.cu/pdf/bvg/v19n4/2074-8647-bvg-19-04-285.pdf

Bonilla-Buitrago, R. R., González de Bashan, L. E., & Pedraza, R. O., Estrada Bonilla, G. A., Pardo Díaz, S., Mazo Molina, D. C.,… Ramírez Gómez, M. M. (2021). Bacterias promotoras de crecimiento vegetal en sistemas de agricultura sostenible (pp. 368). Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria-AGROSAVIA. https://doi.org/10.21930/agrosavia.analisis.7405019

Castañeda-Salinas, C., Sandoval-Villa, M., Sánchez-Monteón, A., Alejo-Santiago, G., Jiménez-Meza, V., Aburto-González, C., & García-López, M. (2013). Respuesta de Plántulas de uchuva (Physalis peruviana L.) a diferentes concentraciones de nitrato y amonio. Revista Bio Ciencias, 52(311), 148–153. Recuperado de https://revistabiociencias.uan.edu.mx/index.php/BIOCIENCIAS/article/download/45/43/90

Creus, C. M. (2017). Inoculantes microbianos: Piezas de un rompecabezas que aún requiere ser ensamblado. Revista Argentina de Microbiología, 49(3), 207–209. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.07.001

Domingues-Duarte, C. F., Cecato, U., Trento-Biserra, T., Mamedio, D., & Galbeiro, S. (2020). Azospirillum spp. en gramíneas y forrajeras. Revisión. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 11(1), 223–240. https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i1.4951

Durán-Ramírez, F. (2009). Manual de la uchuva (48 pp.). Grupo Latino. Recuperado de https://www.uea.edu.ec/pmb/index.php?lvl=notice_display&id=424

Erkaya, T., Daǧdemir, E., & Sengül, M. (2012). Influence of Cape gooseberry (Physalis peruviana L.) addition on the chemical and sensory characteristics and mineral concentrations of ice cream. Food Research International, 45(1), 331–335. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2011.09.013

FAO, FIDA, OMS, PMA, & UNICEF. (2022). El estado de la seguridad alimentaria y la nutrición en el mundo 2022. Adaptación de las políticas alimentarias y agrícolas para hacer las dietas saludables más asequibles. Autor. https://doi.org/10.4060/cc0639es

Fibach-Paldi, S., Burdman, S., & Okon, Y. (2012). Key physiological properties contributing to rhizosphere adaptation and plant growth promotion abilities of Azospirillum brasilense. FEMS Microbiology Letters, 326(2), 99–108. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2011.02407.x

Fischer, G., Almanza-Merchán, P. J., & Miranda, D. (2014). Importancia y cultivo de la uchuva (Physalis peruviana L.). Revista Brasileira de Fruticultura, 36(1). https://doi.org/10.1590/0100-2945-441/13

Gastelum-Osorio, D. A., Sandoval-Villa, M., Trejo-López, C., & Castro-Brindis, R. (2013). Fuerza iónica de la solución nutritiva y densidad de plantación sobre la producción y calidad de frutos de Physalis peruviana L. Revista Chapingo Serie Horticultura, 19(2), 197–210. https://doi.org/10.5154/r.rchsh.2012.01.002

Gómez-Marroquín, M. R., & Núñez-Zarantes, V. M. (2014). Sistemas de Producción. En Estado del arte de la investigación en uchuva Physalis peruviana L. (pp. 31–33). Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. https://doi.org/10.21930/978-958-740-180-6

González-Mancilla, A., Rivera-Cruz, M. del C., Ortiz-García, C. F., Almaraz-Suárez, J. J., Trujillo-Narcía, A., & Cruz-Navarro, G. (2013). Use of organic fertilisers to improve soil chemical and microbiological properties and citric Citrange troyer growth. Universidad y Ciencia : Fertilizantes Orgánicos En Suelo, 28(2), 123–139. Recuperado de www.universidadyciencia.ujat.mx

Grzebisz, W. (2015). Chapter 6. Magnesium. En Handbook of Plant Nutrition (2nd ed., pp. 199–260). Taylor & Francis Group.

Ipek, M., Pirlak, L., Esitken, A., Figen Dönmez, M., Turan, M., & Sahin, F. (2014). Plant growth-promoting Rhizobacteria (PGPR) increase yield, growth and nutrition of strawberry under high-calcareous soil conditions. Journal of Plant Nutrition, 37(7), 990–1001. https://doi.org/10.1080/01904167.2014.881857

Jiménez-Gómez, A., Celador-Lera, L., Fradejas-Bayón, M., & Rivas, R. (2017). Plant probiotic bacteria enhance the quality of fruit and horticultural crops. AIMS Microbiology, 3(3), 483–501. https://doi.org/10.3934/microbiol.2017.3.483

Koul, V., Tripathi, C., Adholeya, A., & Kochar, M. (2015). Nitric oxide metabolism and indole acetic acid biosynthesis cross-talk in Azospirillum brasilense SM. Research in Microbiology, 166(3), 174–185. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2015.02.003

Martínez, F. E., Sarmiento, J., & Fischer, G. (2008). Efecto de la deficiencia de N, P, K, Ca, Mg y B en componentes de producción y calidad de la uchuva (Physalis peruviana L .) Agronomía Colombiana, 26(3), 389–398.

Miranda, D., Ulrichs, C., & Fischer, G. (2012). Efecto del cloruro de sodio (NaCl) sobre el crecimiento y la colonización micorrízica en uchuva (Physalis peruviana L.). En L. J. Martínez Martínez (Ed.), Avances de la Investigación Agronómica II (pp. 15–26). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia.

Moreno-Reséndez, A., García-Mendoza, V., Reyes-Carrillo, J. L., Vásquez-Arroyo, J., & Cano-Ríos, P. (2018). Rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal: Una alternativa de biofertilización para la agricultura sustentable. Revista Colombiana de Biotecnología, 20(1), 6883. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v20n1.73707

Moura, P. H. A., Coutinho, G., Pio, R., Bianchini, F. G., & Curi, P. N. (2016). Cobertura plástica, densidade de plantio E poda na produção de fisális (Physalis peruviana L.) em região subtropical. Revista Caatinga, 29(2), 367–374. https://doi.org/10.1590/1983-21252016v29n213rc

Osorio, N. W. (2012). pH del Suelo y disponibilidad de nutrientes. Manejo Integral del Suelo y Nutrición Vegetal, 1(4), 4–7. Recuperado de http://www.walterosorio.net/web/sites/default/files/documentos/pdf/1 4 pH del suelo y nutrientes_0.pdf

Patiño-Torres, C., & Sanclemente, O. (2014). Los microorganismos solubilizadores de Fósforo (MSF): Una alternativa biotecnológica para una agricultura sostenible. Entramado, 10(2), 288–297. Recuperado de http://www.scielo.org.co/pdf/entra/v10n2/v10n2a18.pdf

Piña-Guillén, J., García-Meneses, V., Herrera-López, H., & Flores-Torres, J. A. (2016). Valoración de cepas silvestres de Azospirillum sp. y Gluconacetobacter sp. como promotoras de crecimiento vegetal. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 7(7), 1613–1623. https://doi.org/10.29312/remexca.v7i7.154

Puente, L., Pinto, M. C., Castro, E., & Cortés, M. (2011). Physalis peruviana L., the multiple properties of a highly functional fruit: A review. Food Research International, 44, 1733–1740.

Ramírez-Martínez, F. (2022). Evaluación de la respuesta de uchuva (Physalis peruvianum L.) bajo Invernadero bajo la aplicación de cuatro láminas de riego. Tesis como requisito parcial para obtener el grado de: Maestro en Ciencias Hidrociencias [Tesis de maestría, Colegio de Postgraduados]. Colpos Digital. Recuperado de http://colposdigital.colpos.mx:8080/xmlui/handle/10521/4899

Rodríguez-Mendoza, M. N., Miguel-Chávez, R. S., García-Cué, J. L., & Benavides-Mendoza, A. (2013). Inoculación de bacterias promotoras de crecimiento en el cultivo de melón (Cucumis melo). Interciencia, 38(12), 857–862.

Rueda, D., Valencia, G., Soria, N., Rueda, B. B., Manjunatha, B., Kundapur, R. R., & Selvanayagam, M. (2016). Effect of Azospirillum spp. and Azotobacter spp. on the growth and yield of strawberry (Fragaria vesca) in hydroponic system under different nitrogen levels. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 6(1), 048–054. https://doi.org/10.7324/JAPS.2016.600108

Santos, M. S., Nogueira, M. A., & Hungria, M. (2019). Microbial inoculants: Reviewing the past, discussing the present and previewing an outstanding future for the use of beneficial bacteria in agriculture. AMB Express, 9(1). https://doi.org/10.1186/s13568-019-0932-0

Seymen, M., Türkmen, Ö., Dursun, A., & Paksoy, M. (2014). Effects of Bacteria Inoculation on Yield, Yield Components and Mineral Contents of Tomato. Selcuk Journal of Agriculture and Foos Sciences, 28(2), 52–57.

Vizcaíno-Ríos, E. (2021). Prebiótico, Bacillus subtilis y fosfito de potasio para el control de antracnosis y calidad postcosecha del aguacate ˋMéndezˊ. Tesis como requisito parcial para obtener el grado de: Maestra en Ciencias Recursos Genéticos y Productividad. Fruticultura [Tesis de maestría, Colegio de Postgraduados]. Colpos Digital. Recuperado de http://colposdigital.colpos.mx:8080/xmlui/handle/10521/4704

White, P. J. (2015). Chapter 5. Calcium. En Handbook of Plant Nutrition (2nd. ed., pp. 165-198). Taylor & Francis Group.

Notas de autor

robledo3031@gmail.com